Triton-NH4OH细胞裂解液(Triton-NH4OH Lysis Buffer)经过优化配方，在裂解无核红细胞的同时几乎不损伤淋巴细胞(Lymphocyte)或其它有细胞核的细胞。本裂解液经过滤除菌，经过Triton-NH4OH Lysis Buffer处理过的血液或组织细胞样品可以用于后续的细胞培养、细胞融合以及核酸或蛋白的提取及各种常规的分析和检测。

Triton-NH4OH细胞裂解液配制方法配制方法详细介绍：

中文名：Triton-NH4OH细胞裂解液

供应商：信帆生物

规格：100ml

分类：细胞组分分离

保存：4℃,6个月

用途： 裂解细胞获得细胞外基质

说明：主要由0.5%TritonX-100、20mMNH4OH、PBS组成

适用范围：限于科研，实验，不作
Triton-NH4OH细胞裂解液操作步骤：

1.制备细胞悬液: 新鲜组织经过胰蛋白酶或胶原酶等消化处理，通过适当方法制备成细胞悬液，离心弃上清。

2.裂解: 加入3～5倍细胞沉淀体积的Triton-NH4OH Lysis Buffer，轻柔吹打混匀，裂解。本操作步骤在4℃条件下操作更佳，亦可在室温下操作。

3.离心: 4℃，离心5min，弃红色上清。如无低温离心机，本步骤亦可在室温下操作。

4.如果发现红细胞裂解不*，可以重复上述步骤2和步骤3各一次。

5.洗涤：根据实验要求加入适量PBS、HBSS、生理盐水或无血清培养液，轻柔混匀重悬沉淀。4℃，离心2～3min，弃上清，该离心步骤亦可在室温下操作。所加入的PBS、HBSS、生理盐水或无血清培养液的量一般应大于细胞沉淀体积的5倍以上。

6.如有必要，重复上述步骤5一次，共洗涤1～2次。

7.根据实验需要用适当溶液重悬细胞沉淀，进行计数、培养等后续实验。

 配制方法：

1.收集胰蛋白酶消化的细胞并离心，用PBS清洗。

2.用100μl RIPA缓冲液冰浴溶解沉淀10min（每500000个细胞20μl RIPA缓冲液）。

3.10000rpm，4℃离心10min，取上清转移至新管。

4.用考马斯亮蓝法检测蛋白质浓度。

5.用裂解缓冲液将溶液浓度调到5mg/ml,每小瓶中放100μl，-80℃储存。

6.按照1:1体积比混合2×样品缓冲液，煮沸5min后，室温放置5min.

7.短时离心后点样电泳检测。

配制方法注意事项：

1.制备细胞悬液时应根据实验需要，不一定要制备成单细胞悬液。

2.后续试验如果是用于细胞培养，操作过程中应注意无菌操作，尽量在超净工作台内操作。

3.离心步骤尽量在4℃离心机上操作。

4.常规步骤与快速步骤的区别在于：常规步骤多了一步洗涤过程的离心，可以节省洗涤液的用量，并且洗涤效果也更好，不需要大体积的离心管；快速步骤少了一次离心过程，洗涤效果略差一些，同时需要大体积的离心管。

5.离心洗涤后，通常极微量的红细胞不会影响后续的检测。

6.为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。