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NADH 氧化酶(NOX)测试盒 生化试剂

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NADH 氧化酶(NOX)测试盒,广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,可在氧气存在下,直接将NADH 氧化为NAD。

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NADH 氧化酶(NOX)测试盒

(货号:A116-1-1 分光光度法)

一、测定意义:

NOXEC 1.6.99.3)广泛存在于动物、植物、微生

物和培养细胞中,可在氧气存在下,直接将NADH 氧化

NAD。该酶不仅参与NAD 的再生,而且与免疫反应

密切相关。

二、测定原理:

NADH 氧化酶(NADH oxidaseNOX)能够将

NADH氧化为NADNADH 的氧化与2,6 二氯酚靛蓝

DCPIP)的还原相偶联,蓝色的DCPIP 被还原为无色

DCPIP,在600nm下测定蓝色DCPIP的还原速率计算出

NADH 氧化酶活性的大小。

三、需自备的仪器和用品:

可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液

器、1mL玻璃比色皿、研钵、冰、蒸馏水

四、试剂的组成和配制( 50T/48 )

试剂一:液体50mL×1 瓶,-20℃保存。

试剂二:液体10mL×1 瓶,-20℃保存。

试剂三:液体1mL×1 瓶,-20℃保存。

试剂四:液体50mL×1 瓶,4℃保存。

试剂五:液体6 mL×1 瓶,4℃保存。

试剂六:粉剂×2 瓶,-20℃保存;临用前每瓶加入 5mL

蒸馏水,用不完的试剂分装后-20℃保存, 禁

止反复冻融。

五、样本的前处理:

组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:

①、准确称取0.1g 组织或收集500万细胞,加入1mL

剂一和10μL试剂三,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。

②、将匀浆600g4℃离心5min

③、弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g4

离心10min

④、上清液即为除去线粒体的胞浆蛋白,可用于测定从

线粒体泄漏的NOX(此步可选做)。

⑤、步骤④中的沉淀即为线粒体,加入200μL 试剂二和

2μL试剂三,超声波破碎(冰浴,功率20%或200W

超声3s,间隔10 秒,重复30 次),用于NOX

性测定。血清(浆)样品:直接检测。

六、测定步骤:

1 分光光度计预热30min 以上,调节波长至600nm,蒸

馏水调零。

2 样本测定:

1)试剂四、试剂五和试剂六于37℃(哺乳动物)或

25℃(其它物种)孵育5min

2)在1mL比色皿中加入40μL样本、700μL试剂四、

100μL试剂五和160μL试剂六,混匀,记录600nm 20s

时吸光值A11min20s 后的吸光值A2,计算ΔA=A1-A2

七、NOX 活力单位的计算

1、血清(浆)NOX 活力的计算:

单位定义:每mL血清(浆)在每mL反应体系中每分

A600变化0.01定义为一个酶活力单位。

NOXU/mL)=ΔA×V反总÷V÷0.01÷T=2500×ΔA

2、组织、细菌或细胞中NOX 活力的计算:

1)按样本蛋白浓度计算:此法需要自行测定样本

蛋白质浓度。

单位定义:每mg组织蛋白在每mL反应体系中每分钟

A600变化0.01定义为一个酶活力单位。

NOXU/mg prot=ΔA×V反总÷V×Cpr

÷0.01÷T=2500×ΔA÷Cpr

2)按样本鲜重计算:

单位定义:每g 组织在每mL 反应体系中每分钟A600

变化0.01 定义为一个酶活力单位。

NOXU/g 鲜重)=ΔA×V反总÷(W× V÷V

)÷0.01÷T=505×ΔA÷W

3)按细菌或细胞密度计算:

单位定义:每1 万个细菌或细胞在每mL 反应体系

中每分钟A600 变化0.01 定义为一个酶

活力单位。

NOXU/104 cell=ΔA×V反总÷(500×V÷V样总)÷0.01÷T=1.01×ΔA

V反总反应体系总体积,1mL

V加入样本体积,0.04mL

V样总加入提取液体积,0.202 mL

T反应时间,1 min

Cpr样本蛋白质浓度,mg/mL

W样本质量;

500:细胞或细菌总数,500万。

NADH 氧化酶(NOX)测试盒 

 

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